猪细小病毒

出处:按学科分类—农业科学 中国农业出版社《兽医微生物实验诊断手册》第597页(1971字)

本病毒只侵犯,与猪的妊娠障碍,如不孕,死胎和胎儿木乃伊化等有关。

一、样品采集

可采取流产、死产胎儿的肾、肺、肝、肠、脑、睾丸和淋巴结以及胎盘等。

二、病毒分离

一般应用细胞培养。原代乳猪肾细胞和传代猪细胞均可作病毒分离。后者中以SK和IBRS-2细胞系最适,而PK-15不一定能得到满意的结果。

1.由于病毒对处于有丝分裂状态的细胞易于感染,所以,必须在细胞尚未长成单层时就行接种。接种病料乳剂的量为营养液量的1~3/10,37℃吸附90~120min。

2.如用原代细胞,还须有未接种细胞培养进行盲传作对照,以防潜伏性感染。

3.细胞感染后24~72h可产生CPE,细胞呈弥漫性颗粒样变化,变圆脱落,以至溶解。如无可见CPE,必须盲传2~3代。

4.不同细胞培养所得到的感染滴度可不同,一般在105-106.5TCID50/0.2ml,血凝滴度可达1∶1024。

5.在感染后16~36小时,可见核内色涵体。

6.直接用感染猪组织作细胞培养,常能获得更理想的结果。感染猪的血清抗体滴度愈高,分离到病毒的可能性愈大。

三、血清学试验

(一)HA和HI试验 猪细小病毒可凝集豚、人O型、恒河、小白鼠、大白鼠、的红细胞,但以豚鼠红细胞所得结果最为理想。试验可在试管内或微量滴定板上进行,所用缓冲液的pH为7.2~7.3,红细胞浓度在试管法为0.5%,微量法为1%,4℃孵育4~6h。室温下结果不甚可靠。

HI试验用试管法或微量法均可。

1.制备0.5%或1%的豚鼠或鸡的红细胞悬液。缓冲液可用pH7.2的PBS或巴比妥缓冲液,后者不能含钙、镁离子,用时作5倍稀释。

2.血凝抗原可用病毒的细胞培养物制得。将呈现典型CPE的细胞培养物收获,冻融3次,用前测HA价,按试验要求的抗原单位进行稀释。

3.血清先经56℃灭活30min,再按1∶10比例加入50%的豚鼠红细胞悬液,混匀后,4℃放置1h,离心去红细胞。以除去血清中非特异性凝集素。

4.用缓冲液将血清作连续对倍稀释,每个稀释度加入等量的血凝抗原(含8个单位),混匀后室温下感作1h。

5.加入等量0.5或1%的豚鼠红细胞悬液,混匀后置4℃下4~6h后判定结果。

6.判定标准:HI滴度在1∶8以上者,判为阳性。感染猪的滴度可达1∶1024~1∶4000。

(二)中和试验 可用SK或IBRS-2细胞系。

1.将滴度约103TCID50/0.1ml的病毒悬液与等量不同稀释度的灭活血清混合,室温下放置2h。

2.取0.2ml分别接种到3~4支培养24h的细胞培养管,37℃吸附1h,补足维持液。

3.旋转或静止培养5-10天,判定结果。可用HA试验或荧光抗体染色法测定病毒的感染性。

(三)琼扩试验 沉淀抗原可用木乃伊胎猪的脏器悬液。

1.用硼酸盐缓冲液(0.9%硼酸,0.2%NaOH和0.01%叠氮钠,pH8.6)配制1%琼脂糖,融化后倒板,打孔。孔距2.5mm,孔径6mm。

2.每孔加样50μl,抗原加于中央孔,已知血清与待检血清相间加于周围孔。

3.将板置于湿盒内,室温下48h,即可判定结果。

(四)间接荧光抗体技术 此法可检查接种后8~36h的细胞培养,以鉴定病毒的存在。也可快速检测感染胎儿中的病毒抗原或抗体。

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