实验动物注射法
出处：按学科分类—农业科学 中国农业出版社《兽医微生物实验诊断手册》第43页（3414字）
注射材料一般必须无杂菌污染，若为含病毒的材料可能已被细菌污染，则应加入抗生素(青霉素1000u／ml，链霉素1000μg／m1)置40℃1h后，再行注射。供病原分离的组织悬液，应以2000～3000r／min离心沉淀10min，取上清液注射。
一、实验动物被毛除去法
1．剪毛法用剪毛弯头剪紧贴动物皮肤先粗略剪，然后再细剪，为了避免被毛乱飞，事先可用纱布蘸生理盐水将剪毛部位予以湿润。
2．脱毛法适用于家兔、小白鼠等小动物的脱毛剂配方：硫化钠8g、淀粉7g、糖4g、甘油5g、硼砂1g、水75g，共100g，调成稀糊状。
用法：先将被毛剪短(小自鼠不需剪)，用棉球蘸脱毛剂在脱毛部位涂成薄层，经2～3min后，用温水即可洗去脱下的被毛。
对大动物脱毛可使用硫化碱(染土布用)10g、生石灰15g、加水至100ml溶解。也可使用硫化钠8g、淀粉7g、糖4g、甘油5g、硼砂1g、水75m1共100g调成稀糊状，用纱布蘸上此种脱毛剂涂在需脱毛的部位，使被毛湿透，经2～3min，用水将脱下的被毛冲洗掉。脱毛部位事先一定不要用水洗，以免脱毛剂渗透入皮毛根里，刺激皮肤，造成皮肤炎症等变化。
二、使用注射器注意事项
1．检查注射器是否漏气。可用左手握注射器管，其食指将注射器的口堵住。右手轻拉注射器栓，若注射器栓能回复原位，则无漏气现象。拉注射器栓的手不可放开，以免注射器栓自然弹回将针管打破。
2．先计算需用剂量，再吸取注射液。吸入注射液后，需用无名指或中指轻扶注射器栓(图3-9)，以防注射器栓自然滑动，因而吸入空气或使注射液溢出。
图3-9 持注射器法
3．吸入注射液后，应用酒精棉球盖裹针头，以防注射液溢出污染环境。
4．注射前应排出气泡，调整注射液至准确的用量，使调整出的注射液渗入酒精棉球中。
5．注射器一般应平拿，不可针头向上，以防刺伤保定动物的人员。
6．用过的注射器、针头、镊子、酒精棉球及污染物应置消毒盒内及时消毒处理。
三、皮下注射法
选择皮下组织疏松、便于注射和易于吸收的部位。家兔和豚鼠选用腹部或腹股沟部，小白鼠用背部或腹侧。羊、猪可在前、后肢内侧。大动物注颈部皮下。给小白鼠皮下注射，可由一人将小白鼠固定(背部向上)，术者左手用镊子将背部已消毒部位皮肤稍提起，即可在镊子下部注入(图3-10)。也可由术者自己用左手抓小白鼠，右手持注射器进行注射(图3-11)。给家兔和豚鼠皮下注入量一般为0．5～1ml；小白鼠为0．2～0．5ml。
图3-10 小白鼠背部皮下注射法
图3-11 小白鼠腹部皮下注射法
四、肌肉注射法
选择肌肉丰满，无大血管通过处。禽类注射部位为胸肌，其他动物为臀部。
五、皮内注射法
将注部剪毛，若需观察注部反应，则勿用碘酒消毒，可用酒精消毒。皮内注射部位的皮肤不可过于紧张。给小动物注腹部；羊在尾根皱褶处或股内侧；牛、马在颈部。术者用左手将注部皮肤夹起成一皱褶，再将针头刺入皮层，然后缓缓注入。如确注入皮内，则注射时感觉有阻力，注部形成突起的小包。皮内注射量一般为0．1～0．2ml。
六、腹腔内注射法
禽类注射部位在胸骨脊的后缘两侧。注射小动物时，可将其固定倒提使肠管前移，以免刺伤肠管。注射家兔及豚鼠时先将针头在腹股沟处刺入皮下，前进少许，再刺入腹腔而注射，注射量可达5ml。给小白鼠腹腔注射，先用右手提鼠尾，将小白鼠放于铁丝网上，然后用左手食指和拇指捏住鼠的两耳和头部皮肤，再将鼠尾夹于左手的无名指和手掌之间，则鼠的腹部向上，并使其头向下(图3-12)，右手持注射器，将针头先平行刺入皮下，然后向下斜行通过腹部肌肉而入腹腔。注射量为0．5～1ml。给各种动物腹腔内注射时，若无把握针头是否位于腹腔内或误刺入肠管及其他管道，则可将注射器先抽吸一下，若无肠内容物或其他液体吸入注射器中，且抽吸时觉有负压，则表明针头确在腹腔中而非在肠道或其它管道中，此时即可注射。
图3-12 小白鼠腹腔注射法
七、静脉内注射
静脉注射的材料中不得含有气泡或颗粒，否则会引起脑血管栓塞，使动物立即死亡。注射速度应缓慢，大剂量静脉注射，注射液的温度应同体温一致。
家兔：注射部位采取耳缘静脉。若需在同一静脉作多次注射，应从静脉管的远心端开始，逐次向近心端注射，以免血管注射受伤发生阻塞，妨碍以后注射。注射前用酒精棉按摩耳部，然后用手指轻弹耳壳，使其血管舒张，则易注射。必要时用二甲苯擦抹耳壳，则血管明显扩张，但于注射前必须将耳壳擦干，以便于止血。注射时用左手提耳端尖部，食指垫于注射部的耳背面，并于耳壳和食指间垫以酒精棉(图3-13)，以防刺穿耳壳使术者受伤。右手持注射器使针头对准耳静脉血管平行方向刺入。注射开始时，应先轻轻推动注射器栓，以观察针头是否确在静脉内，若未注入静脉，则注部皮下形成隆起，若针头进入血管，则血管中的血液被注射液逐去。注射速度必须缓慢，注射完毕，以酒精棉压迫创口止血。家兔静脉注射可达5m1。
图3-13 家兔耳部静脉注射方法
豚鼠：豚鼠静脉注射比较困难。一般于后肢外侧静脉注射。该静脉上部比较明显，但很活动不易注入。在接近趾部处不太明显，但比较固定，故较易注入。也可将皮肤切开，使静脉露出后注射。或采用心脏内注射(见心脏采血法)。豚鼠静脉注射量不超过2ml。
小白鼠：于尾部静脉注射。用15～20g的小白鼠较易注射。20g以上的小白鼠不易观察静脉，可将尾部浸入50℃温水中泡1min，则血管扩张便于注射。注射时可将小白鼠放入铁丝筐内，将鼠尾从筐孔中拉出，也可用烧杯将小白鼠盖住，将鼠尾从杯口拉出，拉直，从靠近尾的尖端处平行刺入，再向下刺入静脉，注入量不超过1ml。
八、颅腔内注射法
家兔和豚鼠：注射部位在两眼外眦的连接线上，离颅骨正中线约2mm处，注入量约为0．05ml。注射时由助手握紧两耳，将动物按在桌上，并用手指将注部皮肤拉往旁侧按紧，用锥子钻穿颅骨及注射(图3-14)，这样可使皮肤的伤口不在注射点之上，而在注射点的旁边，使注部的钻孔不暴露在伤口中，而被掩盖在皮肤下，以减少污染的可能。注射速度一定要慢，避免引起颅内压急骤升高，注射后用碘酒消毒，并用火棉胶将伤口封闭。
图3-14 家兔颅腔内注射法
小白鼠：给小白鼠颅腔内注射应使用0．25ml注射器，注射量为0．02ml，将注射针头直接刺穿颅骨注射(图3-15)。颅内注射刺入针头不可过深，以免损伤脑组织。注射速度要慢，避免引起颅内压急骤升高。
图3-15 小白鼠颅内注射法
九、鼻内接种法
根据接种病原微生物的种毒，必要时动物需先用乙醚麻醉。大动物用麻醉口罩进行麻醉，小动物可放于有盖的玻璃缸内，缸内放浸有乙醚的脱脂棉，使动物达到麻醉。动物麻醉后，用滴管将接种材料慢慢滴入鼻内。如动物处于深麻状态，则能将接种材料吸入肺内。深麻醉的动物易发生肺水肿，大部分在接种后一天内死亡。还需注意，轻度麻醉的动物企图将接种材料喷出。因此进行此项接种时，术者应戴口罩并隔保护玻璃操作、鼠内接种量不可过大，小鼠接种量为0．03～0．05ml，家兔可达2ml。